ОБНРастительные ресурсы Vegetation Resources

  • ISSN (Print) 0033-9946
  • ISSN (Online) 3034-5723

Сохранение уязвимого вида Oxytropis chankaensis (Fabaceae) в культуре in vitro

Код статьи
S3034572325010067-1
DOI
10.7868/S3034572325010067
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 61 / Номер выпуска 1
Страницы
74-79
Аннотация
Впервые разработан протокол микроклонального размножения Оxytropis chankaensis Jurtz. – редкого эндемика Приморского края. В качестве первичных эксплантов использованы семена второго года хранения. Всхожесть семян составила 36%, жизнеспособность – 75%. Культивирование проводилось на среде Мурасиге и Скуга. Выявлено влияние четырех регуляторов роста (6-бензиламинопурина, тидиазурона, 1-нафтилуксусной кислоты и индолил-3-масляной кислоты) в концентрациях от 0.5 до 2 мг/л, а также их сочетаний на коэффициент размножения и укоренение микроклонов в условиях in vitro. Показано положительное влияние 0.5 мг/л тидиазурона и 2 мг/л индолил-3-масляной кислоты на увеличение числа побегов исследуемого вида. Коэффициент размножения на средах с вышеуказанными регуляторами роста составил 6 и 7 соответственно. Одновременное внесение двух регуляторов роста в питательную среду приводит к образованию каллусной ткани, которая в дальнейшем витрифицируется. Образование корней отмечается на средах Мурасиге–Скуга, дополненных 1 мг/л индолил-3-масляной кислоты или 0.5 мг/л 1-нафтилуксусной кислоты.
Ключевые слова
микроклональное размножение редкие виды сохранение биоразнообразия эндемичный вид
Дата публикации
03.03.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
55

Библиография

  1. 1. Артюкова В. Е., Козыренко М. М. 2012. Филогенетические отношения Oxytropis chankaensis Jurtz. и Oxytropis oxyphylla (Pall.) DC. (Fabaceae) по данным секвенирования ITS рибосомного оперона ядерной ДНК и межгенных спейсеров хлоропластного генома. — Генетика. 48(2): 186–193. https://elibrary.ru/oowiht
  2. 2. Воронкова Н. М., Холина А. Б. 2010. Сохранение эндемичных видов Дальнего Востока России с помощью глубокого замораживания семян. — Известия РАН. Серия биологическая. 5: 581–586. https://elibrary.ru/mvntdl
  3. 3. Воронкова Н. М., Холина А. Б. 2017. Биология прорастания и хранение семян эндемичных видов рода остролодка (Oxytropis DC., семейство Fabaceae) Сибири и Дальнего Востока России. — Вестник ДВО РАН. 2: 23–30. https://elibrary.ru/zizpkb
  4. 4. Малышев Л. И. 2008. Разнообразие рода остролодка (Oxytropis) в Азиатской России. — Turczaninowia. 11(3): 5–141. https://elibrary.ru/jvhfqv
  5. 5. Павлова Н. С. 1989. Oxytropis DC. — В кн.: Сосудистые растения советского Дальнего Востока. Л. Т. 4. С. 236–280.
  6. 6. Павлова Н. С. 2008. Остролодочник ханкайский – Oxytropis chankaensis (Jurtz.). — В кн.: Красная книга Приморского края: Растения. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и грибов. Владивосток. С. 136–137. https://redbookpk.ru/index_plants.html
  7. 7. Павлова Н. С., Уланова К. П. 1971. К химическому исследованию дальневосточных видов рода Oxytropis DC. — В сб.: Тез. конф. Биологически активные вещества флоры и фауны Дальнего Востока и Тихого океана. Владивосток. С. 19.
  8. 8. Юрьева О. В., Гамбург К. З., Казановский С. Г. 2008. Клональное микроразмножение Oxytropis triphylla (Fabaceae). — Раст. ресурсы. 44(3): 36–40. https://elibrary.ru/julbcv
  9. 9. Шретер А. И. 1975. Остролодочник ханкайский – Oxytropis hailarensis Kitag. f. chankaensis (Jurtz.) Kitag. [О. oxyphylla (Pall.) DC., S.L.]. — В кн. Лекарственная флора советского Дальнего Востока. М. С. 163.
  10. 10. Бердасова К. С., Пьянова А. С., Каменева Л. А. 2023. Влияние абиотических факторов на всхожесть in vitro семян Oxytropis chankaensis Jurtz., редкого эндемичного вида Дальнего Востока России. — Botanica Pacifica. 12(2): 168–171. https://doi.org/10.17581/bp.2023.12206 (на англ.)
  11. 11. Burlakova L. E., Karatayev A. Y., Karatayev V. A., May M. E., Bennett D. L., Cook M. J. 2011. Endemic species: Contribution to community uniqueness, effect of habitat alteration, and conservation priorities. — Biological Conservation. 144(1): 155–165. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2010.08.010
  12. 12. Deepa A. V., Thomas T. D. 2020. In vitro strategies for the conservation of Indian medicinal climbers. — In Vitro Cell. Dev. Biol. — Plant. 56(6): 784–802. https://doi.org/10.1007/s11627-020-10084-x
  13. 13. Guo B., Abbasi B. H., Zeb A., Xu L. L., Wei Y. H. 2011. Thidiazuron: a multi-dimensional plant growth regulator. — Afr. J. Biotechnol. 10: 8984–9000. https://doi.org/10.5897/AJB11.636
  14. 14. Guo B., Stiles A. R., Liu C. Z. 2012. Thidiazuron enhances shoot organogenesis from leaf explants of Saussurea involucrate Kar. et Kir. — In Vitro Cell. Dev. Biol. — Plant. 48(6): 609–612. https://doi.org/10.1007/s11627-012-9468-6
  15. 15. He W., Guo B., Fan P., Guo L., Wei Ya. 2015. In vitro propagation of a poisonous plant Oxytropis glabra (Lam.) DC. — Plant Cell. Tiss. Organ. Cult. 120(1): 49–55. https://doi.org/10.1007/s11240-014-0577-2
  16. 16. Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. — Physiol. Plant. 15(3): 473–497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека