ОБНРастительные ресурсы Vegetation Resources

  • ISSN (Print) 0033-9946
  • ISSN (Online) 3034-5723

Calendula officinalis (Asteraceae) как радиосенсибилизатор для лучевой терапии опухолей

Код статьи
10.31857/S0033994624010089-1
DOI
10.31857/S0033994624010089
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 60 / Номер выпуска 1
Страницы
112-124
Аннотация
Изучено действие водно-спиртовой настойки календулы лекарственной Calendula officinalis L. (Asteraceae) на опухолевые клетки различного видового и тканевого происхождения, определен ее потенциал как радиосенсибилизатора в сочетании с γ-излучением. Установлено, что настойка календулы вызывает гибель опухолевых клеток независимо от их p53 и p21 статуса. Настойка календулы обладает антиоксидантными свойствами, однако для клеток с активным р21 проявляет радиосенсибилизирующие, а не радиопротекторные свойства. Для клеток с отсутствием р21 настойка календулы является радиопротектором, таким образом, гибель клеток является р21 опосредованной. Проведено исследование радиосенсибилизирующих свойств C. officinalis на модели меланомы in vivo у мышей. В сочетании с γ-излучением настойка вызывает значительное торможение роста опухоли (на 47%) по сравнению с облучением без препарата. Значительный радиосенсибилизационный эффект и преодоление устойчивости опухолевых клеток, вызванной деактивацией р53, обусловливают перспективность настойки в качестве средства для радиотерапии, позволяющего снизить эффективную дозу облучения в 1.7 раз.
Ключевые слова
Calendula officinalis радиотерапия меланома растительные радиосенсибилизаторы
Дата публикации
15.01.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
47

Библиография

  1. 1. Olennikov D.N., Kashchenko N.I. 2022. Marigold metabolites: Diversity and separation methods of Calendula genus phytochemicals from 1891 to 2022. – Molecules. 27(23): 8626. https://doi.org/10.3390/molecules27238626
  2. 2. Jadoon S., Karim S., Hassham M., Asad H.B., Akram M.R., Khan A.K, et al. 2015. Antiaging potential of phytoextract loaded-pharmaceutical creams for human skin cell longetivity. – Oxid. Med. Cell. Longev. Article ID709628. https://doi.org/10.1155/2015/709628
  3. 3. Nicolaus C., Junghanns S., Hartmann A., Murillo R., Ganzera M., Merfort I. 2017. In vitro studies to evaluate the wound healing properties of Calendula officinalis extracts. – J. Ethnopharmacol. 196: 94–103. https://doi.org/10.1016/j.jep.2016.12.006
  4. 4. Dinda M., Mazumdar S., Das S., Ganguly D., Dasgupta U.B., Dutta A., et al. 2016. The water fraction of Calendula officinalis hydroethanol extract stimulates in vitro and in vivo proliferation of dermal fibroblasts in wound healing. – Phytother. Res. 30(10): 1696–1707. https://doi.org/10.1002/ptr.5678
  5. 5. Preethi K.C., Kuttan G., Kuttan R. 2009. Anti-inflammatory activity of flower extract of Calendula officinalis Linn and its possible mechanism of action. – Indian J. Exp. Biol. 47(2): 113–120. https://nopr.niscpr.res.in/handle/123456789/3072
  6. 6. Preethi K.C., Kuttan R. 2009. Hepato and reno protective action of Calendula officnalis L. flower extract. – Indian J. Exp. Biol. 47(3): 163–168. https://nopr.niscpr.res.in/handle/123456789/3293
  7. 7. Barajas-Farias L.M., Pérez-Carreón J.I., Arce-Popoca E., Fattel-Fazenda S., Alemán-Lazarini L., Hernández-García S., et al. 2006. A dual and opposite effect of Calendula officinalis flower extract: chemoprotector and promoter in a rat hepatocarcinogenesis model. – Planta Med. 72(3): 217–21. https://doi.org/10.1055/s-2005–916196
  8. 8. Giostri G.S., Novak E.M., Marcelo Buzzi, Guarita-Souza L.C. 2022. Treatment of acute wounds in hand with Calendula officinalis L.: A randomized trial. – Tissue Barriers. 10(3): 1994822. https://doi.org/10.1080/21688370.2021.1994822
  9. 9. Chandran P.K., Kuttan R. 2008. Effect of Calendula officinalis flower extract on acute phase proteins, antioxidant defense mechanism and granuloma formation during thermal burns. – Clin. Biochem. Nutr. 43(2): 58–64. https://doi.org/10.3164/jcbn.2008043
  10. 10. Givol O., Kornhaber R., Visentin D., Cleary M., Haik J., Harats M. 2019. A systematic review of Calendula officinalis extract for wound healing. – Wound Repair Regen. 27(5): 548–561. https://doi.org/10.1111/wrr.12737
  11. 11. Pommier P., Gomez F., Sunyach M.P., D’Hombres A., Carrie C., Montbarbon X. 2004. Phase III randomized trial of Calendula officinalis compared with trolamine for the prevention of acute dermatitis during irradiation for breast cancer. – J. Clin. Oncol. 22(8): 1447–1453. https://doi.org/10.1200/JCO.2004.07.063
  12. 12. Simões F.V., Santos V.O., da Silva R.N., da Silva R.C. 2020. Effectiveness of skin protectors and Calendula officinalis for prevention and treatment of radiodermatitis: an integrative review. – Rev. Bras. Enferm. 73(suppl 5): e20190815. https://doi.org/10.1590/0034-7167-2019-0815
  13. 13. Jiménez-Medina E., Garcia-Lora A., Paco L., Algarra I., Collado A., Garrido F. 2006. A new extract of the plant Calendula officinalis produces a dual in vitro effect: cytotoxic anti–tumor activity and lymphocyte activation. – BMC Cancer. 6: 119. https://doi.org/10.1186/1471-2407-6-119
  14. 14. Preethi K.C., Siveen K.S., Kuttan R., Kuttan G. 2010. Inhibition of metastasis of B16F-10 melanoma cells in C57BL/6 mice by an extract of Calendula officnalis L. flowers. – Asian Pac. J. Cancer Prev. 11(6): 1773–1779. https://journal.waocp.org/article_25449.html
  15. 15. Hormozi M., Gholami M., Babaniazi A., Gharravi A.M. 2019. Calendula officinalis stimulate proliferation of mouse embryonic fibroblasts via expression of growth factors TGFβ1 and bFGF. – Inflamm. Regen. 39: 7. https://doi.org/10.1186/s41232-019-0097-x
  16. 16. Cordova C.A.S., Siqueira I.R., Netto C.A., Yunes R.A., Volpato A.M., Filho V.C., et al. 2002. Protective properties of butanolic extract of the Calendula officinalis L. (marigold) against lipid peroxidation of rat liver microsomes and action as free radical scavenger. – Redox Rep. 7(2): 95–102. https://doi.org/10.1179/135100002125000325
  17. 17. Шишкина Л.Н., Мазалецкая Л.И., Смирнова А.Н., Швыдкий В.О. 2021. Ингибирующая эффективность липидного компонента растительных объектов в зависимости от полярности элюента. – Биофизика. 66(3): 482–488. https://doi.org/10.31857/S000630292103008X
  18. 18. Цепалов В.Ф., Харитонова А.А., Гладышев Г.П., Эммануэль Н.М. 1977. Определение констант скорости и коэффициентов ингибирования фенолов–антиоксидантов с помощью модельной цепной реакции. – Кинетика и катализ. 18(5): 1261–1267.
  19. 19. Цепалов В.Ф., Шляпинтох В.Я. 1962. Константы скорости элементарных реакций процесса окисления этилбензола молекулярным кислородом. – Кинетика и катализ. 6(3): 870–876.
  20. 20. Donehower L.A., Soussi T., Korkut A., Liu Y., Schultz A., Cardenas M., et al. 2019. Integrated Analysis of TP53 Gene and Pathway Alterations in The Cancer Genome Atlas. – Cell Rep. 28(5): 1370–1384.E5. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.07.001
  21. 21. Kuang Y., Kang J., Li H., Liu B., Zhao X., Li L., et al. 2021. Multiple functions of p21 in cancer radiotherapy. – J. Cancer Res. Clin. Oncol. 147(4): 987–1006. https://doi.org/10.1007/s00432-021-03529-2
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека